Пролиферация клеток характеризуется
de novo синтезом ДНК в течение S-фазы клеточного цикла в соответствии с увеличением транскрипционной активности, сопровождаемой
de novo синтезом РНК.
Обычный подход к
мониторингу общего синтеза ДНК и РНК основан на
включении аналога 5-меченого (деокси) уридина вместо его структурного аналога (в РНК - урацила, в ДНК тимидина) в синтезируемую ДНК или РНК цепь клеточной ДНК или РНК полимеразой соответственно. Нефосфорилированный меченый (деокси)уридин (5-
X-(d)U) является клеточно-проницаемым и потому
пригоден для in vivo мечения (в живых клетках)
[1-5]. Напротив, меченые (деокси)уридин трифосфаты (5-
X-(d)UTP) не являются клеточно-проницаемыми и могут быть
использованы для in vitro анализа синтеза ДНК/РНК (в бесклеточных экстрактах)
[6,7], или необходимо доставлять их в клетки для
in vivo исследований, например, в липосомах (липофекция) или микроинъекциями
[8].
Традиционные подходы основаны на включении Бромин-меченых (деокси)уридинов (
5-Br(d)U) или (деокси)уридин-трифосфатов (
5-Br(d)UTP), которые затем детектируются специфическими антителами BrdU (Таб. 1). Однако, существуют жесткие процедуры обеспечения проницаемости, необходимые для достижения достаточной эффективности окрашивания, необходимые вследствие высокой молекулярной массы антител (около 150.000 kDa), что ограничивает уровень диффузии антител в клетку.
Внедрение этинил-меченого (деокси) уридина (
5-E(d)U) обеспечивает новую альтернативу мониторингу синтеза ДНК и РНК
in vivo. Детекция 5-E(d)U достигается ковалетной конъюгацией с
азид-содержащим флуорофором в Cu(I) катализируемой алкин-азид клик-реакции (CuAAC) (Таб. 1), которые легко вводить в клетки в мягких условиях проницаемости вследствие их значительно меньшего размера (<1000 kDa).