Наиболее известной CLICK реакцией является Cu(I)- катализируемая реакция Азид - концевой Алкин (CuAAC) с использованием таких метаболитов, как 5-EdU, 5-EU или O-Пропаргил-пуромицин с последующей детекцией Азидными реагентами (Азиды флуоресцентных красителей, (Дестио)Биотинилированные Азиды или FLAG Азиды).
Но по причине токсичности Cu(I) использование реакции CuAAC в живых клетках является затруднительным. Эту проблему можно решить с использованием лигандов, хелатирующих Cu(I) таких как THPTA, которые служат двум целям: 1) Ускоряют реакции CuAAC, поддерживая степень окисления Cu(I) и 2) Защита биомолекул от окислительного повреждения.[1,2]
Пиколил-Азиды выводят рекацию CuACC на новый уровень биосовместимости и эффективности:[3,4,5]
- они обладают медь-хелатирующей группой и потому требуют намного меньшей концентрации меди (≥ 10 µM) для достижения аналогичной эффективности реакции сравнительно с традиционными Азид-реагентами (≥ 100 µM) (Таблица. 1)
- они значительно повышают эффективность мечения при использовании в классических условиях медь-катализируемой клик-рекации (100 µM CuSO4 + 500 µM THPTA)[3]
Таблица 1: Пиколил-Азиды требуют в 10 раз меньше меди для достижения эффективности традиционных Азид-реагентов.
R = Флюорофор, (Дестио)биотин или FLAG.
|
Азид[1,2] |
Пиколил-Азид[3] |
Вспомогательный CuAAC реагент |
|
|
CuSO4 |
100 µM – 250 µM[1,2] |
10 µM – 100 µM[3] |
THPTA |
500 µM – 1.25 mM[1,2] |
50 µM – 500 µM[3] |
Аскорбат натрия |
5 mM – 12.5 mM[1,2] |
500 µM – 5 mM[3] |
Соотношение CuSO4 : THPTA |
1 : 5 |
Соотношение CuSO4 : Аскорбат натрия |
1 : 50 |
Таблица 2: Пиколил-Азид реагенты. n/a: неприменимо; *: свободный краситель;
Также вас могут заинтересовать алкин-модифицированные КЛИК-реагенты для работы с ДНК, тотальной РНК, поли(А) хвостом мРНК и мониторинга синтеза белка.
Литература:
[1] Presolski et al. (2011) Copper-Catalyzed Azide-Alkyne Click Chemistry for Bioconjugation. Current Protocols in Chemical Biology 3:153.
[2] Hong et al. (2011) Analysis and Optimization of Copper-Catalyzed Azide-Alkyne Cycloaddition for Bioconjugation. Angew. Chem. Int. Ed. 48:9879.
[3] Uttamapinant et al. (2012) Fast, Cell-Compatible Click Chemistry with Copper-Chelating Azides for Biomolecular Labeling. Angew. Chem. Int. Ed. 51:5852.
[4] Uttamapinant et al. (2013) Site-specific protein labeling using PRIME and chelation-assisted click chemistry. Nature Protocols 8:1620.
[5] Jiang et al. (2014) Monitoring Dynamic Glycosylation in Vivo Using Supersensitive Click Chemistry. Bioconjug. Chem. 25 (4):698.
Информация представлена исключительно в ознакомительных целях и ни при каких условиях не является публичной офертой